

La posible utilización de dicho programa por diferentes personas
y departamentos del mismo laboratorio ha impuesto el diseñar un
programa que funcione en red de forma multiusuario, facilitando el acceso
al mismo desde cualquiera de los ordenadores del laboratorio que conforman
dicha red definida por el propio supervisor del laboratorio. Este funcionamiento
en red obliga a la introducción de los siguientes controles:
• Definir el acceso al programa a sólo los ordenadores de
la red que disponga el supervisor del laboratorio.
• Catalogar a los propios usuarios del programa en diferentes escalas
otorgando distintos niveles de permisos que aseguren el correcto funcionamiento
del mismo y la protección de los datos que en él se archiven.
• Analizar los resultados inicialmente por un usuario y confirmar
los mismos por un supervisor para la oportuna incorporación al
archivo propio de la persona.
• Mantener un fichero auditor que permita identificar cada uno de
los accesos y operaciones realizadas por cualquiera de las personas a
las que se les ha facilitado el trabajar con el HLA Fusion.
• Oligotipaje HLA por el método rSSO y sistema Luminex:
1. Importación de las sesiones de lectura obtenidas en el sistema
Luminex, comprobando previamente los resultados obtenidos por los controles
particulares de cada muestra y pudiendo eliminar aquellas muestras que
no cumplan los criterios de aceptabilidad por incorrecta amplificación
de los controles positivos o contaminación de la reacción
indicada por los controles negativos.
2. Análisis global previo de la sesión realizada, comprobando
los resultados de todos los controles positivos y negativos de todas las
muestras y la posible existencia de simultáneas reacciones falsamente
positivas o negativas de algún grupo de partículas para
todos las muestras; pudiendo realizar las oportunas correcciones que la
experiencia del propio usuario decida y basándose tanto por el
control de calidad interno de One Lambda como de posibles
controles de calidad creados por el propio laboratorio.
Todas estas maniobras tienen como finalidad la posibilidad de llegar a
una aceptación global de los resultados de todas las muestras.
3. Análisis parcial por grupos de las muestras de una sesión
que presentan el oligotipaje asignado automáticamente, muestras
con ambigüedades, posibles falsas reacciones o ausencia de asignaciones.
4. Análisis individual de cada una de las muestras, comprobando
los resultados de la misma a nivel serológico, media resolución
NMDP y alta resolución; la posible existencia de reacciones cercanas,
la visualización de las fluorescencias individuales de cada uno
de los grupos de partículas y su relación con su punto de
corte, las lecturas obtenidas en el sistema Luminex, la zona génica
identificada por cada sonda y otras sondas que detectan zonas cercanas
a la misma, etc.
5. Análisis combinado de los resultados de la muestra obtenido
en esa sesión del Luminex con otros resultados previamente analizados
ya sea en otras sesiones rSSO o con otros kits del método MicroSSP.
6. Confirmación por el supervisor de los resultados previamente
analizados y automática asignación del tipaje al registro
particular de cada muestra.
7. Obtención del informe directo de los resultados de dicha sesión
y de cada muestra individual.
8. Posibilidad de realizar sesiones ya archivadas con la incorporación
de nuevas nomenclaturas HLA.
• Oligotipaje HLA por el método MicroSSP:
1. Introducción manual de los resultados obtenidos en el gel de
electroforesis.
2. Incorporación de la fotografía del gel al archivo particular
de cada muestra.
3. Análisis individual de cada muestra, comprobando los resultados
de la misma a nivel serológico, media resolución NMDP y
alta resolución; la posible existencia de reacciones cercanas,
etc.
4. Análisis combinado de los resultados de la muestra obtenido
en ese gel con otros resultados previamente analizados con otros kits
de los métodos rSSO y MicroSSP.
5. Confirmación por el supervisor de los resultados previamente
analizados y automática asignación del tipaje al registro
particular de cada muestra.
6. Obtención del informe directo de los resultados de cada muestra
individual.
• Análisis de anticuerpos anti HLA por el método
de citometría múltiple Luminex (LABScreen):
1. Importación de las sesiones de lectura obtenidas en el sistema
Luminex, comprobando previamente los resultados obtenidos por los controles
particulares de cada muestra y pudiendo eliminar aquellas muestras que
no cumplan los criterios de aceptabilidad basándose en las fluorescencias
del control positivo y negativo.
2. Análisis global previo de la sesión realizada y aceptación
del mismo, siempre y cuando el supervisor asigne esta posibilidad al usuario
que esté trabajando con el programa.
3. Análisis individual de cada una de las muestras, facilitando:
- Comprobar los resultados bajo diferentes fórmulas de cálculo
(vaselina, fluorescencias, ratios, etc.).
- Modificar los puntos de corte y la definición de positividades
según valores NIH (1,2,4,6,8) o de fluorescencia
- Comprobar la asignación automática de los anticuerpos
ya sea con la nomenclatura serológica o de ADN.
- Seleccionar o deseleccionar los antígenos del Locus Cw al análisis
de anticuerpos.
- Introducir manualmente la asignación final de anticuerpos individuales
o por grupos CREG.
- Calcular el %PRA frente a los antígenos existentes en el reactivo
o a partir de los tipajes archivados en el programa de personas definidas
como posibles donantes.
4. Análisis combinado de los resultados de una muestra obtenidos
tanto en otras sesiones previas LABScreen como con otros kits de los métodos
FlowPRA, LAT y LCT.
5. Obtención del informe directo de los resultados de dicha sesión
y de cada muestra individual.
6. Obtención del histórico de los análisis realizados
a todos los sueros de un paciente, pudiendo obtener un virtual ‘cross
match’.
• Análisis de anticuerpos anti HLA por los métodos
de citometría convencional (FlowPRA), ELISA (placas LAT) y de linfocitotoxicidad
(placas LCT de células):
1. Introducción manual de los resultados, utilizando los tradicionales
valores NIH de 1, 2, 4, 6 y 8.
2. Análisis individual de cada muestra, comprobando el cálculo
estadístico de %PRA y la asignación de anticuerpos por frecuencias
individuales o por grupos CREG de los posibles anticuerpos existentes
en el suero.
3. Análisis combinado de la asignación de los resultados
de la muestra con diferentes kits del mismo método o de otros métodos…
LCT, LAT, FlowPRA y LABScreen.
4. Confirmación por el supervisor de los resultados previamente
analizados.
5. Obtención del informe directo de los resultados de cada muestra
individual.